Immunoliposomy - novoe sredstvo dostavki lekarstvennykh preparatov


Cite item

Full Text

Abstract

В конце XIX века немецкий бактериолог Пауль Эрлих предложил термин "волшебная пуля", подразумевающий химиопрепарат, который находит в организме и избирательно убивает опухолевые клетки без повреждения окружающих здоровых тканей. С тех пор селективный транспорт химиотерапевтических препаратов к опухоли in situ остается предметом многочисленных исследований. Одним из способов достижения этой цели является разработка липосомальной лекарственной формы противоопухолевых препаратов.Оригинальным направлением в липосомологии явилась разработка нового поколения лекарственных препаратов - иммунолипосом.К настоящему времени описано несколько препаратов иммунолипосом, потенциально перспективных для применения в онкологической практике.Кроме того, иммунолипосомы стали применять для создания иммуномагнетиков с целью фракционирования CD34-положительных стволовых клеток человека, для создания иммунодиагностикумов.

Full Text

В конц е XIX века немецки й бактериолог Пауль Э рлих предло жи л тер ми н "волш ебная пуля", подразумевающ и й хи мио - препарат , котор ы й находит в организме и избирательно убивает опухолевы е клетки без повреждения окру ж ающ и х здоровы х тканей. С тех по р селективн ы й тра нспор т хи мио терапев - тических препаратов к опухол и in situ остается предметом мно гочисле нны х исследований. О дни м и з способо в достижени я это й цел и является разработка липосо м ально й лекарственно й ф орм ы противоопухолев ых препаратов . Липо со м ы представляю т собо й закр ы ты е с ф ерические пузырьки, образова нны е и з ф ос ф олипидов , котор ы е состоят и з гидро фильно й головки и гидро ф обног о хвоста. В ходе образования ли- посо м гидро фи льн ы е вещ ества об ы чн о попадаю т в срединно е водно е пространств о пузырьков , а липо фи льн ы е субстанции встраиваю тся в ф ос ф олипидн ы й слой. Липо со м ы вперв ы е описан ы окол о 30 лет назад и на зва н ы ф ос ф олипидн ым и с ф е - рулами. Вначале липосо м ы использовалис ь как модельна я система пр и изучении биологических м ембран, а затем - как средство доставки лекарственн ы х препаратов , в то м числ е и противоопухолевых . П оследующ ие исследования в это м направлении привел и к созданию больш ог о количеств а липосо - м альн ы х ф орм , способн ы х нест и ш ироки й спект р препаратов, неко тор ы е и з ни х уже на ш л и клиническо е применение . Липо со м ы сущ ественн ы м образо м улучш или терапевтическую э фф ективност ь противоопухолев ых препаратов и снизил и токсич нос т ь п о сравнени ю с о свободн ым и субстанция м и [1, 2]. О днак о не все цитостатики пригодны для создания липо - со м альн ы х лекарственн ы х ф орм . Так, пр и вкл ю чени и метот- рексат а и цитозар а в липосо м ы их токсич нос т ь возрастает , тогда как пр и вкл ю чени и доксорубицина - снижается. Н едостатком липосо м альн ы х ф ор м является и х бы страя оп- сонизаци я пр и внутривенно м введении и последующ и й захват клетками ретикулоэндотелиальной систе м ы (РЭС). Для преодоления захвата липосо м мононуклеара м и РЭС учен ы е разработал и липосо мы - невидимки . С это й цель ю в липидн ы й сло й липосо м встраиваю т полиэтиленгликол ь (ПЭГ), чт о приводит к повы ш ени ю осмотическог о давления вокруг липосо м и препятствуе т их сбли ж ени ю с клеткой. Эти везикулы называю тся пегилированными липосо м а ми , он и являю тся невидимым и для клеток РЭС и долгое врем я циркулирую т в крови. О днак о пегилированные липосо м ы име ю т сущ ественн ы й недостаток - он и также плох о накапливаю тся в опухоли. О ригинальн ы м направление м в липосо мо логи и явилас ь разработка ново г о поколени я лекарственн ы х препаратов - иммунолипосом. И мм унолипосо м ы представляю т собо й липосомы, к котор ы м прикреплены моноклональн ы е антитела (МКА). МКА обеспечиваю т специ фи ческо е связы вание липосом с антигенпозитивн ым и клетками, а липосо м ы несут соответствующ ий гидро ф обн ы й ил и гидро фи льн ы й хи мио тера - певтический препарат . В настоя щ е е врем я различаю т тр и типа иммунолипосом: А, В и С [3]. В иммунолипосома х тип а А МКА ковалентно связаны с об ы чн ым и липосо м а м и посредством коротког о якоря. Тип В - эт о уже пегилированные липосо мы , в котор ы х МКА также ковалентно связаны с ним и посредством коротког о якоря . Тип С ( Pendant-type PE G - imm unoliposom es) - эт о стерически стабилизированн ы е ПЭГ липосо мы , в котор ы х МКА прикреплены к дистальном у тер мин ально м у конц у ПЭГ. С помо щ ь ю липосо м типа А бы ло убедительно продемонст рировано , чт о иммунолипосомы боле е э фф ективн о доставляют лекарства в клетки-миш ени по сравнени ю с об ы чн ым и липосомами в тестах как in vitro, так и in vivo [4]. О днак о связывани е иммунолипосо м с клетками-миш еня м и in vivo б ы л о более сложным . И зуче ние иммунолипосо м in vivo показало, чт о прикрепление к липосо м а м антител усиливало их захват мононуклеарами РЭС. Эфф ективност ь связы вания иммунолипосо м с клетками-миш еня м и зависела от плотност и антите л на поверхност и липосо м . Захват иммунолипосо м клетками РЭС и эндотелиальн ы й барьер, разделяющ и й сосудистое русло от опухолевой ткани, побудил и исследователе й к созданию нового типа липосо м . Это привел о к конструированию стерически стабилизированн ы х иммунолипосом, с удлиненн ы м периодо м циркуляции в крови. В первых работа х по созданию долгоциркулиру юш и х иммунолипосо м к стерически стабилизированн ы м липосо м а м , содер ж а щ и м ф ос ф олипид ы с мо ди фици рованн ым и ПЭГ головн ым и группа ми, антитела бы ли прикреплены чере з коротки й гидро фи льн ы й якор ь близко к поверхност и липосо м (липосомы типа В) [5]. Эти липосо м ы сохранял и свойств о долговрем енно й циркуляции, но взаимо действие с клетками-мишенями бы ло угнетено по то м у же механизму, как и угнетение захвата мононуклеара м и РЭС, т.е. из-за блокады ПЭГ [6]. П озж е МКА бы ли прикреплены к дистальн ы м конца м цепе й ПЭГ, связанн ы м с липосо м а м и (л ипосомы типа С). Это привело к сохранени ю способност и стерически стабилизированны х липосо м специ фи ческ и связываться с клеточно й поверхнос ть ю клеток-миш ене й и быть за щ и щ енн ым и от захвата мононуклеарами РЭС [7]. С равнение э фф ективност и специ фи ческог о связы вания и захвата мононуклеара м и РЭС эти х тре х типо в иммунолипо сом, проведенно е К М а ш уат а [3] на модели МКА 34А проти в поверхностног о эпителия легких, показало, чт о 42 ,5 % липосом типа А накапливаю тся в легких, а в кров и и печен и выявляется небольш о е количество. П р и введении липосо м типа С специ фи ческ и связываю тся 56,6% от введенной доз ы липосо м . В кров и и печени накапливалос ь м ень ш е препарат а (7%), че м пр и инъекци и липосо м типа А. Липо со м ы типа В показали ни зки й уровень специ фи ческог о связы вания и окол о 60 % препарат а от введенной доз ы долг о циркулировал о в крови. Таким образом, наиболе е перспективными явля ю тс я липосо м ы типа С. В настоя щ е е врем я для ковалентног о прикреплени я МКА к тер мин альн ы м конца м ПЭГ, с цель ю получения стабильной связи антите л с ПЭГ, использую т тр и метода, т.е. связы вание чере з серу (th io ther) [7], ами дн ы е группировк и (am ide) [3] и ги- дразоны ( h idraz one ) [8]. К антителам, используемым в конструировании иммунолипосом, предъявляю т определенн ы е требова ния . МКА дол жн ы сохранит ь свою специ фи чност ь пр и конъ ю гаци и с липосомами, имет ь а финность , достаточну ю для связы вания ни зко й концентраци и иммунолипосом, обладат ь ни зко й иммуноген- ностью . С это й цель ю использую т гу м анизированн ы е МКА, для удаления мышино г о белка, а также Fab' ф рагмент ы антите л для удаления ф рагменто в Fe. Антитела дол жн ы э фф ективн о ин - тер нализов ы ваться клетками-ми ш еня м и путем эндоцитоза , обладат ь биологической активность ю и усиливат ь противо опухолевы й ответ. МКА дол жн ы бы ть тех ноло гич н ы в произ водстве и имет ь достаточн ы й сро к хранени я [9]. К антигену, являющ ем уся миш ень ю для иммунолипосом, также име ю тся определенн ы е требова ния . О н дол ж ен сильно и го мо ге нн о экспрессироватьс я в опухолевой ткани, бы ть жи з ненн о важным для опухолевой клетки и не исчезат ь с клеточ но й поверхности. Антиген дол ж е н миним альн о слущи- ваться с поверхност и опухолевой клетки для избежания связ ы вани я иммунолипосо м с растворим ы м антигеном ил и усилени я клиренса . К омплекс антиген-и мм унолипосо м а дол ж е н пиницитироватьс я в опухолевую клетку. Связь антите л с липосо м а м и дол жн а бы ть стабильной в крови. Я корь не дол ж е н связываться с распозна ющ и м м естом на молекуле антите л и бы ть иммуногенен, дол ж е н быть нетоксиче н и избегат ь опсонизации, не дол ж ен влият ь на препара т в липосо м е , стабильност ь липосо мно й м е мбр ан ы и оказы вать стерическое препятствие . Эфф ективно е связы вание иммунолипосо м с клетками-миш еня м и происходит ли ш ь тогда, когда миш ен и находятся в сосудистом пространств е ил и когда иммунолипосомы проходя т сквоз ь слабую сосудистую стенку. В литературе рассматрива ю тся два анато мич ески х подхода. П ерв ы й - эт о уже существующ и е внутрисосудист ы е места, такие как поверхностный эндотелий сосудов, клетки кров и ил и тро мбы . В торой - м ене е доступн ы е места, такие как солидн ы е опухоли, места инфекци и ил и воспаления, в котор ы х сосудистые структуры слабы [3]. Д оказано, чт о капиллярна я проницаемост ь эндотелиаль - но г о барьера во внов ь васкулиризируе мы х опухолях значитель н о выше, че м в нормальных тканях. Н ормальн ы е тка н и вы стланы нефенес трирова нны м сосудистым эндотелие м , и прохождени е м акро молекул ил и липосо м в тка н ь затруд нено. К роме того, в опухолевой тка н и практически отсутствует дренировани е ли мф атическо й системой , поэтому макромолекулы и липосо м ы накапливаю тся в опухолевой тка н и и остаю тся там длительное время. Н ескольки м и м етода м и в различн ы х опухолевы х моделях н а мыш а х бы ло убедительно доказано, чт о липосо м ы диа м етро м 100 -20 0 н м проходя т чере з сосудистую стенку и накапливаю тся в опухолевой ткани. Больш о е з начени е имее т соотно ш ени е антите л к липида м в иммунолипосоме . Так, пр и весовом соотно ш ени и 1:50 к одно й липосо м е присоединялос ь 24 молекулы моноклональн ы х антител, а пр и соотно ш ени и 1:1 - 93 5 молекул антител. Специфи ческо е накоплени е иммунолипосом, конструированн ы х пр и соотно ш ени и 1:50, бы ло Ъ% от введенной дозы, а созданны х пр и соотно ш ени и компоненто в 1:1 - 60 % от введенной доз ы иммунолипосом. Захват иммунолипосо м клетками печени сни ж ался с 50% от введенной доз ы для липосо м с ни зки м содер ж ание м антите л до 12% для липосо м с в ы соким содержание м антител. П р и это м захват иммунолипосом, содер ж а щ и х ни зко е количеств о антител, н е отличалс я о т захвата об ы чн ы х липосо м . И мм унолипосо мы , котор ы е не связались с клетками- миш еня м и пр и первых нескольких пассажа х чере з опухолевые капилляры , накапливалис ь в печен и и селезенке [3]. С пецифическа я доставка противоопухолев ых препаратов с помо щ ь ю иммунолипосо м способствовала лучш ей терапевтическо й э фф ективност и и сни ж ени ю токсич нос т и по сравнени ю с об ы чн ым и липосо м а м и [1]. Это б ы л о убедительно проде мон стрировано на моделях солидн ы х опухоле й у мыш е й [10] на ксенотрансплантата х человеческой В-клеточ ной ли м - ф ом ы у гол ы х мыш е й [8]. К нас тоя щ е м у вре м ен и описан о нескольк о препарато в имм унолипосо м , потенциально перспективных для примене ни я в онкологическо й практике . Он и направлены проти в клеток, экспрессиру ющ и х антигены CD 71 ( рецепто р тра нс - ф еррина) , H er2/ne u ( рецепто р эпидер м альног о ф актор а роста ) [11], HLA-DR (а н тиге н ы гистосов м ести мо ст и II класса) [12, 13], CD1 9 ( об щ е- В -клеточ ны й м аркер ) [8], LL2 (а н тиге н В -клеточ но й ли мфомы ) [14] и др. К роме того, иммунолипосомы стали применят ь для создани я иммуномагнетико в с цель ю ф ракционировани я CD 34-no- ло жи тель ны х стволовы х клеток человека [15], для создания иммунодиагностикумо в [ 16] и т.д. Таким образом, иммунолипосомы могут воплотит ь иде ю Пауля Э рлих а о "в ол ш ебно й пуле", избирательно находить и убиват ь опухолевую клетку, не поврежда я окру ж ающ и е тка н и и не оказы вая токсическог о действия на организ м больного. Н о следует учесть, чт о иммунолипосомы - эт о технологически очен ь сложн ая систем а доставки лекарственн ы х препаратов, завися щ ая от мно ги х составля ющ и х ее компонентов . Однак о бурно е развитие биотехнологии вселяет надежду на то, чт о иммунолипосомы дойдут д о клиники.
×

About the authors

A Yu Baryshnikov

N A Oborotova

References

  1. Lasic D.D., Papahadjopoulos D. Liposomes revisited: Science. 1995; 267: 1275-6.
  2. Harrington K.L., Lewanski C.R., Stewart S.W. Liposomes as vehicles for targeted therapy of cancer/Part2: C linical development. Clin Oncol 2000; 12: 16-24.
  3. Maruyama K. In vivo targeting by liposomes. Biol Pharm Bull 2000; 23: 791-9-
  4. Wright S., Huang L. Advanced Drug Delivery Rev 1989; 3:343-40.
  5. Torchilin V.P., Klibanov A.L., Huang L. et al. Targeted accumulation of polyethylene glycol - coated immunoliposomes in infarcted rabbit myocardium. FASEB] 1992;6:2716-9-
  6. Torchilin V.P., Papisov M.L., Bogdanov A.A. et al. Molecular mechanissm of liposome and immunoliposome steric protection with poly(ethylene glycol) in "Stealth Liposomes". D.Lasic, F.Martin (Eds),P.51-62. CRC Press Boca Raton.F.L. 1995.
  7. Alien T.M., Brandeis E., Hansen C.B. et al.A new strategy for attachment of antibodies to sterically stabilized liposomes resulting in efficient targeting to cancer cells. Biochim Biophys Acta 1995; 1237:99-108.
  8. Lopes de Menezes D.E., Pilarski L.M., Belch A.R., Alien T.M. Selective targeting of immunoliposomal doxorobicin against human multiple myeloma in vitro and ex vivo. Biochim Biophys Acta 2000; 1466 (1 -2): 205-20.
  9. Kirpotin D., Park J., Hong K. et al. Sterically stadilized anti-HER2 immunolipo¬ somes: desin and targeting to human breast cancer cells in vitro. Biochemistry 1997;36:66-75.
  10. Parkf.W., Hong K., Kirpotin D.E., Papahandjopoulos C.C, Benz C.C. Adv Pharmacol 1997; 40:399-435.
  11. Papahadjopoulos D., Kilpotin D.B., Park F.W., Hong K, Yi Shao, Shalaby R., Colbern G, Benz C.C. Targeting of drugs to solid tumors using anti-HER2 immunoliposomes.] Liposome Research 1998; 8 (4): 425-42.
  12. Dufresne L, Desormeaux A., Bestman-Smith, Gourde P., Tremblay M., Bergeron M.G. Targeting lymph nodes with liposomes bearing anti-HLA-GR Fab'fragments. Biochim Biophys Acta 1999; 1421 (2): 284-94.
  13. Bestman-Smith F, Gourde P., Desormeaux A., Tremblay M., Bergeron M.G. Sterically stabilized liposomes bearing anti-HLA-DR antibodies for targeting the primary cellular reservoirs of HIV-1. Biochim Biophys Acta 2000; 1468 (1 -2); 161-74.
  14. Lundberg B.B., Griffiths G, Hansen H. Specific binding of sterically stabilized anti-B-cell immunoliposomes and cytotoxicity of entrapped doxorubicin. Intf Pharm 2000; 205 (1 -2): 101 -8.
  15. Merrcadal M., Domingo F.C , Petriz J., Garcia J., de Madariaga M.A. Preparation of immunoliposomes bearing poly (ethylene glycol)-coupled monoclonal antibody linked via a clevable disulfide bond for ex vivo applications. Biochim Biophis Acta 2000; 1509:299-310.
  16. Park S., Durst R.A Immunoliposoine sandwich assay for the detection of Escherichia coli 0157:H7.Anal Biochem 2000; 280 (1): 151-8.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2001 Consilium Medicum

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 69203 от 24.03.2017 г. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 63964
от 18.12.2015 г.



This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies