Rannyaya diagnostika metastaticheskoy uveal'noy melanomy: sovremennye vozmozhnosti i perspektivy razvitiya (obzor literatury)


Cite item

Full Text

Full Text

Увеальная меланома (УМ) – вторая по частоте меланома после кожной, самое распространенное первичное злокачественное новообразование сосудистой оболочки глаза. Заболеваемость УМ в разных странах различна. В России заболеваемость по обращению в разных регионах составляет 6,23–8 чел на миллион взрослого населения [1]. В Москве частота случаев этой опухоли в последние годы увеличилась и составляет 13,3 случая на 1 млн взрослого населения [2]. Несмотря на совершенствование методов лечения меланомы хориоидеи на протяжении последних десятилетий, смертность от метастазов остается высокой [3]. Бессобытийная 5-летняя выживаемость наблюдается лишь у 50% пациентов. Даже после успешного местного лечения опухоли метастазы развиваются у 34% пациентов [4]. Чаще всего УМ метастазирует в печень (91%), легкие (28%) и кости (18%) [5]. Средняя продолжительность жизни пациентов с установленными метастазами УМ обычно составляет 5–12 мес [6, 7]. С появлением новых обнадеживающих методов лечения метастатического поражения печени (в том числе интраартериальной химиотерапии) раннее обнаружение метастазов приобретает большое значение. В настоящее время нет общепринятого плана обследования больных на предмет выявления метастазов УМ. На практике при подозрении на метастазы оправдано дублирование или комбинирование двух-трех диагностических методов, особенно при получении противоречивых результатов. Например, в тех случаях, когда при ультразвуковом исследовании (УЗИ) органов брюшной полости метастазы не выявлены, а при сцинтиграфии печени с технефитом выявлены вторичные очаги, компьютерная томография (КТ) или ядерно-магнитный резонанс (ЯМР) помогают разъяснить ситуацию. Для полноты клинической картины целесообразно также провести биохимическое исследование крови [8]. Диагностическая ценность разных методов исследования не равнозначна. По мнению J.Pe’er и соавт., наиболее информативна КТ органов брюшной полости и грудной клетки. Диагностическая значимость биохимического исследования крови для раннего выявления метастазов в печень минимальна [9]. По данным анкетирования онкологов США и Европы, подходы специалистов этих стран к диагностике ранних метастазов УМ имеют некоторые различия. Опрос показал, что специалисты американских центров COMS больше полагаются на биохимические тесты функций печени и рентгенологическое исследование органов грудной клетки. Так, COMS рекомендует ежегодное физикальное обследование больных УМ, проведение рентгенографии легких и печеночных проб, а при подозрении на метастатическое поражение печени – повторную оценку печеночных проб, УЗИ, МРТ или КТ и биопсию печени [5]. В то же время большинство офтальмоонкологов европейских центров (OOG – Ocular Oncology Group of EORTC) для первичной диагностики метастазов в печень и последующего наблюдения за больными с метастатической УМ рекомендуют УЗИ, КТ и МРТ печени [10]. Методы диагностики метастазов УМ Визуальные методы На современном этапе развития диагностическая техника позволяет обнаруживать практически все печеночные метастазы размером более 1 см [11]. Наиболее широко применяется УЗИ печени, которое позволяет обнаружить метастазы в 37–89% случаев [11–13]. Тем не менее КТ печени более чувствительна, чем УЗИ. Так, S.Leyvras и соавт. провели сравнительную оценку диагностической ценности допплер-УЗИ, КТ, МРТ во время артериальной портографии печени (КТАП) и интраоперационного УЗИ (прямое исследование печени перед интраартериальной химиотерапией). Из 30 метастазов, которые были обнаружены во время КТАП, 29 (97%) были выявлены с помощью интраоперационного УЗИ, 23 (77%) – КТ, 20 (67%) – посредством МРТ, и лишь 11 (37%) – с помощью допплер-УЗИ. В целом чувствительность УЗИ оценивается в 80–90%, а КТАП в 85–95% с динамической КТ в промежутке между этими цифрами [7, 14, 15]. Хорошие результаты дает сцинтиграфия с йодобензамидами. Йодобензамиды (BZA) обладают сродством к тканям меланомы. Сцинтиграфия с йодобензамидом-2 в диагностике метастазов УМ продемонстрировала хорошую переносимость, 100% чувствительность и 95% специфичность метода (по сравнению с КТ всего тела и УЗИ) [16]. Обнадеживающий метод диагностики метастазов УМ – позитронная эмиссионная томография (ПЭТ)/КТ всего тела с использованием фтордезоксиглюкоза (ФДГ) [16]. ФДГ-ПЭТ как самостоятельный метод выявления метастазов УМ показала 100% чувствительность и 67% специфичность [18]. Синтез картин ПЭТ и КТ объединяет данные о структуре и функции, уменьшая таким образом количество ложноположительных результатов. Ранее ПЭТ/КТ применялась для выявления метастазов кожной меланомы, диссеминированной лимфомы, гастроинтестинальных злокачественных образований [19, 20, 22]. ПЭТ/КТ позволяет обнаруживать опухоли, которые при использовании стандартных методов (КТ, рентгенография, МРТ) могут остаться невыявленными или злокачественность которых трудно оценить. Что касается исследования легких, то необходимость ежегодной рентгенографии органов грудной клетки ставится под сомнение, так как, по данным COMS и других исследователей, ежегодная рентгенография выявляет изменения не более чем в 3% случаев [5, 21]. S.Eskelin и соавт. рекомендуют проводить рентгенографию легких только при первичном обследовании больных УМ или при появлении легочных симптомов [21, 22]. Маркеры сыворотки крови К сывороточному маркеру метастазирования предъявляются высокие требования. Помимо высоких чувствительности и специфичности, желательно, чтобы маркер обладал и прогностической ценностью: позволял предсказать развитие метастазов. Печеночные пробы Большинство исследователей отмечают низкую чувствительность печеночных проб в диагностике метастазов меланомы хориоидеи. Так, в многоцентровом исследовании COMS чувствительность печеночных проб составила 14,7% (специфичность 92,3%). Наиболее чувствительным было определение уровня щелочной фосфатазы (25%) [5]. По мнению COMS, необходим поиск других маркеров. В работах других специалистов наибольшей прогностической ценностью среди печеночных маркеров обладала ЛДГ [23] и гамма-ГТ [24]. I.Kaiserman и соавт. сообщили о раннем выявлении метастазов УМ с помощью печеночных проб у 30 пациентов. В их исследовании уровни ЛДГ и АсАТ были прогностически значимыми при незначительном повышении печеночных проб на уровне верхней границы нормы. Такое нерезкое повышение показателей фиксировалось за 6 мес до выявления печеночных метастазов с помощью УЗИ и КТ [25]. Таким образом, по мнению авторов, целесообразно отмечать не только значения, выходящие за пределы лабораторной нормы, но и стойкие повышения в пределах нормы. MIA Использование в качестве маркера белка MIA (Melanoma Inhibitory Activity) обусловлено связью его сывороточной концентрации с прогрессией опухоли. Белок секретируется тканью меланомы и ослабляет связь опухолевых клеток с экстрацеллюлярным матриксом, повышая способность к инвазивному росту [26]. Сывороточная концентрация белка MIA у пациентов с метастатической болезнью достоверно выше, чем у больных без метастазов меланомы хориоидеи (p<0,001) [27–29]. Однако MIA не позволяет предсказать развитие метастазов. К тому времени, как повышается концентрация MIA, возможно подтверждение метастазов с помощью УЗИ и КТ печени. S100-B Многообещающим маркером метастазирования является кальцийсвязывающий протеин S100-B. Для прогнозирования метастазирования S100-B показал себя более ценным маркером, чем MIA: уже на момент энуклеации его концентрация оказалась значимой для последующего развития метастазов [23]. Следует отметить, что чувствительность и специфичность показателя S100-B выше, чем MIA [30, 31]. Остеопонтин Остеопонтин – это гликопротеин, который секретируется очагами метастатической УМ в печени. Концентрация остеопонтина в сыворотке достоверно выше у пациентов с метастазами меланомы хориоидеи, чем у пациентов без метастазов и здоровых лиц (p<0,0001) [32, 33]. Чувствительность и специфичность метода высокие: 87,5 и 87,5% соответственно [32]. Еще большей чувствительностью для определения ранних метастазов и специфичностью обладает комбинированный тест на остеопонтин, MIA и S-100B [34]. Однако остеопонтин, как и MIA, не является прогностическим фактором развития метастазов УМ. Факторы иммунного ответа Интерферон. При прогрессии УМ происходит изменение сывороточных концентраций интерферонов (ИФН), что может быть использовано для определения прогноза [35–37]. Начальная стадия УМ характеризуется выраженным снижением продукции ИФН (p<0,01), у большинства больных УМ в стадиях T2M0N0 – Т3M0N0 отмечается тенденция к усугублению дефицита продукции ИФН по сравнению со стадией T1M0N0. Стадия генерализации меланомы отличается гиперпродукцией ИФН. В.Г.Лихванцевой и соавт. был запатентован способ прогнозирования клинического течения УМ: при концентрации ИФН сыворотки, превышающей 160 пкг/мл, ожидают ухудшение клинического течения заболевания с повышением вероятности метастазирования [36]. Достоинством метода является его диагностическая ценность при метастазах любой локализации. Повышение исходных сывороточных уровней ИФН часто опережало выявление метастазов инструментальными методами. ФНО-. Абсолютное большинство пациентов с УМ имеют системный и местный дефицит ФНО-. Дефицит ФНО- нарастает по мере прогрессирования опухоли [38, 39]. Продукция этого цитокина прекращается незадолго до развития метастазов, что делает ФНО, по мнению О.С.Слеповой и соавт. ценным для прогноза метастазирования показателем [40]. Циркулирующие опухолевые клетки По данным А.Ф.Бровкиной и соавт., при первичном обращении больных УМ метастазы выявляются только в 0,78% случаев [41]. В дальнейшем у части больных в первые 3 года после успешного местного лечения развиваются метастазы. Данные факты позволяют предположить диссеминацию злокачественных клеток уже на момент первичного диагноза. На практике, независимо от размера опухоли и времени, прошедшего с момента лечения, циркулирующие злокачественные клетки (ЦЗК) были выявлены как у пациентов с недавно установленным диагнозом, так и у больных, подвергавшихся лучевой терапии или энуклеации [42]. Количество ЦЗК оценивают на основе содержания в крови транскриптов тирозиназы и Melan/MART1. Результаты последних исследований показали, что присутствие транскриптов тирозиназы и Melan/MART1 – независимый прогностический фактор метастазирования и продолжительности жизни больных первичной меланомой хориоидеи [43, 44]. Противоречивость более ранних сообщений может объясняться неточно- стями в использованных лабораторных методиках определения маркеров. Исследование опухолевой ткани: определение иммуногистохимических и генетических маркеров для выделения группы риска метастазирования УМ. Количество туморинфильтрирующих иммунных клеток Известно, что макрофаги взаимодействуют с клетками опухоли посредством различных цитокинов и способны как предотвращать, так и усиливать рост опухоли (в том числе путем усиления секреции MIA). Считается, что наличие в опухолевой ткани большого количества туморинфильтрирующих CD68+-макрофагов, а также лимфоцитов и эпителиоидных клеток – фактор неблагоприятного прогноза [45–7]. Собственная сосудистая сеть опухоли Характер неоваскуляризации. Густая капиллярная неоваскуляризация первичной опухоли коррелирует с прогрессией первичной меланомы и ее метастазированием [48, 49]. Наличие капиллярных петель и сеток достоверно связано со снижением 10-летней выживаемости пациентов (p<0,0001) [50]. Кроме того, для прогноза имеет значение наличие шунтов, параллельных сосудов с перемычками между собой и сосудистых дуг с разветвлениями [49]. Маркеры ангиогенеза. Получены данные, доказывающие прогностическую значимость цитокинов, стимулирующих ангиогенез УМ: VEGF и рецепторов к нему (Flt-1 и Flk-1/KDR-1). VEGF – многофакторный цитокин, который стимулирует пролиферацию эндотелиальных клеток, их миграционную способность и является фактором выживаемости. Продукция VEGF в эндотелиальных клетках опухолевых сосудов обнаруживается только в стадии T2M0N0, далее нарастает, достигая максимума к стадии Т4N0M0 (p<0,01), и исчезает на фоне состоявшегося метастазирования. Для прогноза важен процент клеток меланомы, экспрессирующих рецепторы к VEGF, и локализация рецепторов в клетке (в ядре, цитоплазме или в ядре и цитоплазме) [51]. Анализ показал, что прогностически неблагоприятными при УМ следует считать обнаружение более 20% Flk-позитивных опухолевых клеток с ядерной рецепцией, а также опухоли с индексом соотношения Flt в цитоплазме/Flt в ядре более 3,0. Антигены клеток опухоли в прогнозе УМ Для оценки риска метастазирования УМ ряд исследователей (М.В.Верещагина и соавт.) предложили определять уровень экспрессии конкретных антигенов опухолевых клеток. Они сопоставили результаты морфологического, гистологического, электронно-микроскопического и иммуногистохимического исследований образцов ткани УМ и предложили систему прогнозирования на основе иммуногистохимических маркеров S-100, CD45, CD31/CD34. S-100 – тканедифферентационный маркер, экспрессия которого в исследовании ослабевала по мере снижения тканевой дифференцировки (p<0,05). CD45 – маркер туморинфильтрирующих иммунных клеток, экспрессия которого ассоциировалась с высокой степенью риска летального исхода (p=0,1). CD31 и CD34 – маркеры эндотелиальных клеток, количественная оценка экспрессии которых также являлась информативным показателем витального прогноза. Согласно полученным данным, количественные показатели экспрессии этих антигенов могут использоваться в качестве самостоятельного, независимого фактора прогноза, позволяющего, по мнению авторов, с высокой степенью достоверности осуществлять отбор пациентов в группу риска развития метастазов [47]. Генетические нарушения В ряде исследований показано, что одним из наиболее ценных прогностических факторов метастазирования УМ является моносомия 3. Потеря хромосомы 3 обнаруживается, по разным данным, в 50–60% опухолей и представляет собой самое частое генетическое нарушение в клетках меланомы. Моносомия 3 – ранний и определяющий признак прогрессирования опухоли [52–55]. В ряде работ убедительно демонстрируется диссеминация лишь тех меланом, которые потеряли одну из хромосом 3 [56–60]. УМ с дисомией 3 и с моносомией 3 различаются по экспрессии ряда генов и представляют собой два разных класса опухолей, которые ранее не могли быть выделены из-за отсутствия различий в клинических проявлениях [56]. Имеет значение не только количественная потеря хромосомы 3, но и утрата гетерозиготности по хромосоме 3, которая обладает большей диагностической ценностью, чем изолированное определение моносомии 3 [59]. При анализе на моносомию 3 материала, полученного с помощью тонкоигольной аспирационной биопсии, следует учитывать, что возможна неоднородность ткани меланомы по моносомии, которая ведет к ошибкам диагностики [61]. Среди других генетических нарушений в клетках опухоли, влияющих на прогноз, выделяют мутации хромосом 1, 6 и 8, причем потеря гетерозиготности хотя бы по одной из этих хромосом чаще встречается в опухолях с моносомией 3 (40%), чем с дисомией 3 (10%). Известно также, что потеря короткого плеча хромосомы 1 (1p) наблюдается только в опухолях с моносомией 3 (p=0,0001). Высказано предположение о том, что гены 1p имеют значение для прогрессии меланом с моносомией 3 [60]. Обнаружена связь моносомии 3 с экспрессией опухоли HLAантигенов класса I и II, с большим количеством туморинфильтрирующих макрофагов [58] и формированием неоваскуляризации в виде капиллярных сеток [61]. Приведенные данные отчасти раскрывают механизм влияния моносомии 3 на развитие метастазов. Большинство исследователей признают, что выявление моносомии 3 является основополагающим для выделения групп больных УМ с высоким риском метастазирования. Новым направлением в прогнозировании течения меланомы является выделение классов УМ, различающихся профилем генной экспресии. Метод выявляет уровень экспрессии каждого из генов клеток опухоли. На основании сведений о сильно и слабо экспрессирующихся генах прогнозируют поведение меланомы. Получены данные о том, что профилирование генной экспресии меланомы позволяет предсказать развитие метастазов с большей точностью, чем наличие моносомии 3 [62–64]. Так, в исследовании L.Worley и соавт. чувствительность и специфичность профилирования генной экспресии составляли 84,6 и 92,9% соответственно, а чувствительность и специфичность теста на моносомию 3 варьировали от 58,3 и 85,7% (при исследовании методом сравнительной геномной гибридизации) до 50,0% и 72,7% соответственно (при использовании метода флюоресцентной in situ гибридизации) (см. рисунок) [62]. Возможность прямого исследования ткани опухоли: проблемы и пути решения В настоящее время значительное количество больных УМ получают различные виды органосохраняющего лечения (брахитерапия, транспупиллярная термотерапия и т. д.), при которых исключено получение материала для гистологического исследования. По вопросу применения тонкоигольной аспирационной биопсии (ТИАБ) однозначного ответа нет. Существует мнение, что ТИАБ нежелательна, так как может стимулировать метастазирование, а также вызвать рост по ходу раневого канала [65]. Тем не менее большинство офтальмоонкологов Европы и США применяют ТИАБ в диагностике УМ. E.Midena и соавт. разработали специальную методику транссклеральной 25G ТИАБ с целью обнаружения моносомии 3, которая выполняется непосредственно перед фиксацией офтальмоаппликатора к склере. При использовании этой методики осложнений – как ранних, так и поздних – не наблюдалось [66]. Выводы Таким образом, наиболее точными визуальными методами исследования с целью раннего выявления метастазов УМ являются КТ, сцинтиграфия с технефитом или йодобензамидами и комбинированное применение ПЭТ с КТ всего тела. Рентгенография легких малоинформативна, поэтому необходимо применение других методов обследования, например КТ легких. Печеночные пробы также имеют низкую чувствительность. Методы, основанные на анализе сывороточных маркеров (таких как белок MIA, остеопонтин, S-100B, фактор некроза опухоли-), обладают высокой чувствительностью и специфичностью, но, несмотря на обнадеживающие результаты, имеющихся данных недостаточно для того, чтобы рекомендовать их широкое клиническое применение. Перспективным направлением представляется исследование с прогностической целью опухолевой ткани и определение наряду с гистологическим типом меланомы паттернов неоваскуляризации опухоли и/или маркеров ангиогенеза, количества туморинфильтрирующих макрофагов в комплексе с анализом на моносомию 3. Это позволит своевременно формировать группы больных с повышенным риском развития метастазов. Можно предположить, что исследование на моносомию 3 в самом ближайшем будущем станет стандартом выделения групп пациентов с высоким риском метастазирования. Вместе с тем отдельные исследователи указывают на более высокую эффективность метода профилирования генной экспрессии клеток меланомы по сравнению с анализом на моносомию 3. В целом несмотря на то что в последние годы число потенциальных биомаркеров значительно увеличилось, недостаточность знаний о молекулярной биологии меланом не позволяет решить вопрос: следует ли рассматривать различные маркеры в комплексе или классифицировать их в отдельные группы? Внимание исследователей перемещается на механизмы, посредством которых генетические нарушения в клетках опухоли приводят к развитию метастазов. На работы в этой области возлагаются надежды не только по решению задачи прогноза, но и по выявлению точек приложения эффективной терапии метастатической УМ.
×

About the authors

E G Kazimirova

E E Grishina

References

  1. Бровкина А.Ф., Вальский В.В., Гусев Г.А. и др. Офтальмоонкология. Руководство для врачей. Под ред. А.Ф.Бровкиной. М.: Медицина, 2002.
  2. Гришина Е.Е., Федотова О.Ф., Житенев В.П. Анализ офтальмоонкологоческой патологии у взрослого населения Москвы по данным МОКБ. Сб. научн. трудов "Опухоли и опухолеподобные заболевания органа зрения". М., 1998; 28–31
  3. Singh A.D., Shields C.L., Shields J.A. Prognostic factors in uveal melanoma. Melanoma Res 2001; 11: 255–63.
  4. Development of Metastatic Disease After Enrollment in the COMS Trials for Treatment of Choroidal Melanoma: Collaborative Ocular Melanoma Study Group Report No.26. Arch Ophthalmol 2005; 123: 1639–43.
  5. Diener-West M, Reynolds M.S., Agugliaro J.D. et al. Screening for Metastasis From Choroidal Melanoma: The Collaborative Ocular Melanoma Study Group Report No.23. J Clin Oncol 2004; 22 (12): 2438–44.
  6. Albert D.M., Niffennegger A.S., Willson J.K.V. Treatment of metastatic uveal melanoma: review and recommendations. Surv Ophthalmol 1992; 36: 429–38.
  7. Leyvraz S, Spataro V, Bauer J et al. Treatment of ocular melanoma metastatic to the liver by hepatic arterial chemotherapy. Clin Oncol 1997; 15: 2589–95.
  8. Зиангирова Г.Г., Лихванцева В.Г. Опухоли сосудистого тракта глаза. М.: Последнее слово, 2003.
  9. Pe’er J, Amer R, Kaiserman I. The value of screening tests for metastatic uveal melanoma. Final programme and abstract book 2001; 144.
  10. Gombos D.S., Van Quill K.R., Uusitalo M, O'Brien J.M. Geographic disparities in diagnostic screening for metastatic uveal melanoma. Ophthalmology 2004;111 (12): 2254–8.
  11. Robinson P.J. Imaging liver metastases: current limitations and future prospects. Br J Radiol 73 (867): 234–41.
  12. Eskelin S, Pyrhonen S, Summanen P et al. Screening for metastatic malignant melanoma of the uvea revisited. Cancer 1999; 85: 1151–9.
  13. Bedikian A.Y., Legha S.S., Mavligit G et al. Treatment of uveal melanoma metastatic to the liver: a review of the M. D. Anderson Cancer Center experience and prognostic factors. Cancer 1995; 76 (9): 1665–70.
  14. Gore R.M., Levine M.S., Laufer I. Textbook of gastrointestinal radiology. Philadelphia, PA: WB Saunders 1994; 1935.
  15. Grainger R.G., Allison D.J. Diagnostic radiology: a textbook of medical imaging. New York: Churchill Livingstone, 1998; 1169.
  16. Sillaire-Houtmann I, Bonafous J, Veyre A et al. Phase 2 clinical study of 123I-N-(2-diethylaminoethyl)-2-iodobenzamide in the diagnostic of primary and metastatic ocular melanoma. Fr Ophtalmol 2004; 27 (1): 34–9.
  17. Lindholm P, Minn H, Leskinen-Kallio S et al. Influence of the blood glucose concentration on FDG uptake in cancer a PET study. Nucl Med 1993; 34: 1–6.
  18. Francken A.B., Fulham M.J., Millward M.J., Thompson J.F. Detection of metastatic disease in patients with uveal melanoma using positron emission tomography. Surg Oncol 2006; 32 (7): 780–4.
  19. Schoder H, Larson S.M., Yeung H.W.D. PET/computed tomography in oncology integration into clinical management of lymphoma, melanoma and gastrointestinal malignancies. Nucl Med 2004; 45: 72S–81.
  20. Cohade C, Osman M, Leal J, Wahl R. Direct comparison of 18 F-FDG PET and PET/CT in patients with colorectal carcinoma./Nucl Med 2003; 44: 1797–803.
  21. Eskelin S, Pyrhönen S, Summanen P, Prause J.U., Kivelä T. Screening for metastatic malignant melanoma of the uvea revisited. Cancer 1999; 85 (5): 1151–9.
  22. Eskelin S, Kivelä T. Imaging to Detect Metastases From Malignant Uveal Melanoma. Arch Ophthalmol 2002; 120: 676.
  23. Missotten G.S., Korse C.M., van Dehn C et al. S-100B protein and melanoma inhibitory activity protein in uveal melanoma screening. A comparison with liver function tests. Tumour Biol 2007; 28 (2): 63–9.
  24. Felberg N.T., Shields J.A., Maguire J et al. Gamma - glutamyl transpeptidase in the prognosis of patients with uveal malignant melanoma. Am J Ophthalmol 1983; 95 (4): 467–73.
  25. Kaiserman I, Amer R. Liver function tests in metastatic uveal melanoma. Am J Ophthalmol 2004; 137 (2): 236–43.
  26. Callejo S.A., Marshall J.C., Cools-Lartigue J et al. Macrophage - derived soluble factor enhances melanoma inhibitory activity expression by uveal melanoma cells in vitro. Melanoma Res 2004; 14 (2): 91–5.
  27. Reiniger I.W., Schaller U.C., Haritoglou C et al. Melanoma inhibitory activity (MIA): a promising serological tumour marker in metastatic uveal melanoma. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol 2005; 243 (11): 1161–6.
  28. Schaller U.C., Mueller A.J., Bosserhoff A.K. et al. Melanoma inhibitory activity (MIA). Evaluation of a new tumor - associated antigen as a serum marker for uveal melanomas. Ophthalmologe 2000; 97 (6): 429–32.
  29. Schaller U.C., Bosserhoff A.K., Neubauer A.S. et al. Melanoma inhibitory activity: a novel serum marker for uveal melanoma. Melanoma Res 2002;(6): 593–9.
  30. Loppin M, Quillien V, Adamski H et al. Protein S100 beta and Melanoma Inhibitory Activity (MIA): a prospective study of their clinical value for the early detection of metastasis in malignant melanoma. Ann Dermatol Venereol 2007; 134 (6–7): 535–40.
  31. Djukanovic D, Hofmann U, Sucker A et al. Comparison of S100 protein and MIA protein as serum marker for malignant melanoma. Anticancer Res 2000;20 (3B): 2203–7.
  32. Kadkol S.S., Lin A.Y., Barak V et al. Osteopontin expression and serum levels in metastatic uveal melanoma: a pilot study. Invest Ophthalmol Vis Sci 2006;47 (3): 802–6.
  33. Reiniger I.W., Wolf A, Welge-Lüssen U et al. Osteopontin as a serologic marker for metastatic uveal melanoma: results of a pilot study. Am J Ophthalmol 2007; 143 (4): 705–7.
  34. Barak V, Frenkel S, Kalickman I et al. Serum markers to detect metastatic uveal melanoma. Anticancer Res 2007; 27 (4A): 1897–900.
  35. Лихванцева В.Г., Слепова О.С., Бpовкина А.Ф. Интеpфеpоновый статус пpи увеальной меланоме. Вестн. офтальмол. 1999; 115 (6): 35–7.
  36. Лихванцева В.Г., Бровкина А.Ф., Слепова О.С. Способ прогнозирования клинического течения увеальной меланомы. Патент Российской Федерации на изобретение RU 2149404 C1, 7 G01N33/53. 05.20.2000. Регистрационный номер заявки: 99106475/14.
  37. Гольдман Э.М., Гутенко А.И. Значение лабораторных исследований в прогнозе злокачественной увеальной меланомы. Актуальные вопросы биохимии человека и животных. Сб. статей Казахстанского отделения Всесоюзного биохимического общества, Алма-Ата, 1990; 21–2.
  38. Андреева Л.Д., Лихванцева В.Г. Иммуногистохимический анализ апоптоза, интерлейкина-2 и ядерного антигена пролиферации при увеальной меланоме. Опухоли и опухолеподобные заболевания органа зрения. Cб. научных трудов. М., 1998; 10–2.
  39. Ren D.H., Mayhew E, Hay C et al. Uveal melanoma expression of tumor necrosis factor - related apoptosis - inducing ligand (TRAIL) receptors and susceptibility to TRAIL-induced apoptosis. Invest Ophthalmol Vis Sci 2004;(4): 1162–8.
  40. Слепова О.С. и др. Фактор некроза опухоли - альфа при увеальной меланоме. Офтальмологич. журн. 1998; 5: 357–60.
  41. Бровкина А.Ф., Вальский В.В., Зарубей Г.Д. Метастатическое поражение печени у больных с увеальной меланомой. Вестн. офтальмол., 1998;114 (1): 21–3.
  42. Callejo S.A., Antecka E, Blanco P.L. et al. Identification of circulating malignant cells and its correlation with prognostic factors and treatment in uveal melanoma. A prospective longitudinal study. Eye 2007; 21 (6): 752–9.
  43. Schuster R, Bechrakis N.E., Stroux A et al. Circulating tumor cells as prognostic factor for distant metastases and survival in patients with primary uveal melanoma. Clin Cancer Res 2007; 13 (4): 1171–8.
  44. Keilholz U, Goldin-Lang P, Bechrakis N.E. et al. Quantitative detection of circulating tumor cells in cutaneous and ocular melanoma and quality assessment by real - time reverse transcriptase - polymerase chain reaction. Clin Cancer Res 2004; 10 (5): 1605–12.
  45. Mäkitie T, Summanen P, Tarkkanen A, Kivelä T. Tumor-Infiltrating Macrophages (CD68+ Cells) and Prognosis in Malignant Uveal Melanoma. Invest Ophthalmol Vis Sci 2001; 42: 1414–21.
  46. Niederkorn J.Y., Wang S. Immunology of intraocular tumors. Ocul Immunol Inflamm 2005; 13 (1): 105–10.
  47. Верещагина М.В., Лихванцева В.Г., Анурова О.А. Клинические и иммуногистохимические параллели в диагностике опухолей сосудистого тракта глаза и в прогнозировании неопластического процесса. Автореф. дис.. канд. мед. наук. М., 2006.
  48. Toivonen P, M?kitie T, Kujala E, Kivelä T. Microcirculation and Tumor- Infiltrating Macrophages in Choroidal and Ciliary Body Melanoma and Corresponding Metastases. Invest Ophthalmol Vis Sci 2004; 45: 1–6.
  49. Folberg R, Chen X, Boldt H.C. et al. Microcirculation patterns other than loops and networks in choroidal and ciliary body melanomas. Ophthalmology 2001; 108 (5): 996–1001.
  50. Mäkitie T, Summanen P, Tarkkanen A, Kivelä T. Microvascular loops and networks as prognostic indicators in choroidal and ciliary body melanomas. Natl Cancer Inst 1999; 91 (4): 359–67.
  51. Астахова С.Е., Лихванцева В.Г., Ухов Ю.И. и др. Маркеры ангиогенеза в прогнозе увеальной меланомы. Мед. иммунол. 2003; 5 (3–4): 346.
  52. Scholes A.G., Damato B.E., Nunn J et al. Monosomy 3 in uveal melanoma: correlation with clinical and histologic predictors of survival. Invest Ophthalmol Vis Sci 2003; 44 (3): 1008–11.
  53. Gambrelle J, Labialle S, Dayan G et al. Toward monosomy 3 as the main prognosis factor of uveal melanoma: current cytogenetic data. Fr Ophtalmol 2004; 27: 1061–7.
  54. Desjardins L, Levy-Gabriel C, Lumbroso-Lerouic L et al. Prognostic factors for malignant uveal melanoma. Retrospective study on 2,241 patients and recent contribution of monosomy-3 research. Fr Ophtalmol 2006; 29 (7): 741–9.
  55. Nareyeck G, Zeschnigk M, Prescher G et al. Establishment and characterization of two uveal melanoma cell lines derived from tumors with loss of one chromosome 3. Exp Eye Res 2006; 83 (4): 858–64.
  56. Tschentscher F, Hüsing J, Hölter T et al. Tumor classification based on gene expression profiling shows that uveal melanomas with and without monosomy represent two distinct entities. Cancer Res 2003; 63 (10): 2578–84.
  57. Maat W, Jordanova E.S., van Zelderen-Bhola S.L. et al. The heterogeneous distribution of monosomy 3 in uveal melanomas: implications for prognostication based on fine - needle aspiration biopsies. Arch Pathol Lab 2007;(1): 91–6.
  58. Maat W, Long V.L., Jordanova E.S. et al. Monosomy of Chromosome 3 and an Inflammatory Phenotype Occur Together in Uveal Melanoma. Invest Ophthalmol Vis Sci 2008; 49: 505–10.
  59. Onken M.D., Worley L.A., Person E et al. Loss of heterozygosity of chromosome detected with single nucleotide polymorphisms is superior to monosomy for predicting metastasis in uveal melanoma. Clin Cancer Res 2007;(10): 2923–7.
  60. Häusler T, Stang A, Anastassiou G et al. Loss of heterozygosity of 1p in uveal melanomas with monosomy 3. Int J Cancer 2005; 116 (6): 909–13.
  61. Meir T, Zeschnigk M, Masshöfer L et al. The spatial distribution of monosomy and network vasculogenic mimicry patterns in uveal melanoma. Invest Ophthalmol Vis Sci 2007; 48 (5): 1918–22.
  62. Worley L.A., Onken M.D., Person E et al. Transcriptomic versus chromosomal prognostic markers and clinical outcome in uveal melanoma. Clin Cancer Res 2007; 13 (5): 466–71.
  63. Onken M.D., Worley L.A., Ehlers J.P., Harbour J.W. Gene expression profiling in uveal melanoma reveals two molecular classes and predicts metastatic death. Cancer Res 2004; 64: 7205–9.
  64. Tschentscher F, Husing J, Holter T et al. Tumor classification based on gene expression profiling shows that uveal melanomas with and without monosomy represent two distinct entities. Cancer Res 2003; 63: 2578–84.
  65. Вит В.В., Величко Л.Н., Драгомирецкая Е.И. Возможность прогнозирования клеточного типа увеальных меланом без использования инвазивных методов диагностики. Онкология. 2002; 4 (4): 259–62.
  66. Midena E, Bonaldi L, Parrozzani R et al. Loss ofIn vivo detection of monosomy in eyes with medium - sized uveal melanoma using transscleral fine needle aspiration biopsy. Eur J Ophthalmol 2006; 16 (3): 422–2.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2008 Consilium Medicum

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 69203 от 24.03.2017 г. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 63964
от 18.12.2015 г.



This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies