Индукция холинергического фенотипа в клетках нейробластомы мыши фактором роста нервов

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Фактор роста нервов (ФРН) является фактором, определяющим дифференцировку нейронов. ФРН играет важную роль в росте и дифференцировке сенсорных и симпатических нейронов в периферической нервной системе. В зрелом мозге ФРН участвует в поддержании холинергического фенотипа нервных клеток. В работе была исследована возможность индукции холинергического фенотипа в клетках нейробластомы мыши, которые часто используются для моделирования разных физиологических и патологических процессов, протекающих в нервной системе. Клетки нейробластомы линий NB41A3 и Neuro2a чаще всего используются, когда необходимо исследовать свойства холинергических нейронов. В клетках этих линий была обнаружена экспрессия рецепторов TrkA и p75NGFR, которая характерна для холинергических нейронов базальных ядер переднего мозга. Дифференцировку клеток вызывали аппликацией ФРН или 8-Br-цАМФ. ФРН не вызывал выраженной дифференцировки клеток по нейрональному фенотипу. Кроме того, не было обнаружено изменений содержания мРНК и белка холинацетилтрансферазы и везикулярного транспортера ацетилхолина, которые использовали в качестве маркеров холинергического фенотипа. Таким образом, клетки линий NB41A3 и Neuro2a не могут быть рекомендованы для использования в качестве модели холинергических нейронов in vitro, поскольку они не дифференцируются и/или не демонстрируют признаков холинергического фенотипа в ответ на стимуляцию ФРН.

Об авторах

А. А. Корягина

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки
Институт высшей нервной деятельности и нейрофизиологии РАН

Email: nchjournal@gmail.com
Россия, Москва

О. А. Недогреева

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки
Институт высшей нервной деятельности и нейрофизиологии РАН

Email: nchjournal@gmail.com
Россия, Москва

А. А. Буянова

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки
Институт высшей нервной деятельности и нейрофизиологии РАН

Email: nchjournal@gmail.com
Россия, Москва

Ю. С. Спивак

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки
Институт высшей нервной деятельности и нейрофизиологии РАН

Email: nchjournal@gmail.com
Россия, Москва

А. П. Большаков

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки
Институт высшей нервной деятельности и нейрофизиологии РАН

Email: nchjournal@gmail.com
Россия, Москва

Н. В. Гуляева

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки
Институт высшей нервной деятельности и нейрофизиологии РАН

Email: nchjournal@gmail.com
Россия, Москва

М. Ю. Степаничев

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки
Институт высшей нервной деятельности и нейрофизиологии РАН

Email: nchjournal@gmail.com
Россия, Москва

Список литературы

  1. Meakin S.O., Shooter E.M. // Trends Neurosci. 1992. V. 15. P. 323–331.
  2. Sofroniew M.V., Howe C.L., Mobley W.C. // Annu. Rev. Neurosci. 2001. V. 24. P. 1217–1281.
  3. Chao M.V. // Nat. Rev. Neurosci. 2003. V. 4. P. 299–309.
  4. Niewiadomska G., Mietelska-Porowska A., Mazurkiewicz M. // Behav. Brain Res. 2011. V. 221. P. 515–526.
  5. Schliebs R., Arendt T. // Behav. Brain Res. 2011. V. 221. P. 555–563.
  6. Tuszynski M.H. // Cell Transplant. 2000. V. 9. P. 629–636.
  7. Dobryakova Y.V., Spivak Y.S., Zaichenko M.I., Koryagina A.A., Markevich V.A., Stepanichev M.Y., Bolshakov A.P. // Front. Neurosci. 2021. V. 15. P. 745050.
  8. Dobryakova Y.V., Zaichenko M.I., Spivak Y.S., Stepaniche M.Y., Markevich V.A., Bolshakov A.P. // Neurochem. J. 2021. V. 15. P. 273–281.
  9. Stepanichev M.Y. // Neurochem. J. 2011. V. 5. P. 159–168.
  10. Tuszynski M.H., Yang J.H., Barb D., U H.S., Bakay R.A., Pay M.M., Masliah E., Conner J.M., Kobalka P., Roy S., Nagahara A.H. // JAMA Neurol. 2015. V. 72. P. 1139–1147.
  11. Tuszynski M.H., Thal L., Pay M., Salmon D.P., U H.S., Bakay R., Patel P., Blesch A., Vahlsing H.L., Ho G., Tong G., Potkin S.G., Fallon J., Hansen L., Mufson E.J., Kordower J.H., Gall C., Conner J. // Nat. Med. 2005. V. 11. P. 551–555.
  12. Ferro M., Doyle A. // Cell Biol. Toxicol. 2001. V. 17. P. 205–212.
  13. Colom L.V., Castaneda M.T., Reyna T., Hernandez S., Garrido-Sanabria E. // Synapse. 2005. V. 58. P. 151–164.
  14. Colom L.V., Castaneda M.T., Aleman D., Touhami A. // Neurosci. Lett. 2013. V. 541. P. 54–57.
  15. Huh C.Y.L., Danik M., Manseau F., Trudeau L.E., Williams S. // J. Neurosci. 2008. V. 28. P. 1404–1409.
  16. Teles-Grilo Ruivo L.M., Mellor J.R. // Front. Synaptic Neurosci. 2013. V. 5. P. 2.
  17. Mangoura D., Vernadakis A. // Dev. Brain Res. 1988. V. 40. P. 25–35.
  18. Latina V., Caioli S., Zona C., Ciotti M.T., Amadoro G., Calissano P. // Front. Cell Neurosci. 2017. V. 11. P. 68.
  19. Antonov S.A., Manuilova E.S., Dolotov O.V., Kobylyansky A.G., Safina D.R., Grivennikov I.A. // Bull. Exp. Biol. Med. 2017. V. 162. P. 679–683.
  20. Ortiz-Virumbrales M., Moreno C.L., Kruglikov I., Marazuela P., Sproul A., Jacob S., Zimmer M., Paull D., Zhang B., Schadt E.E., Ehrlich M.E., Tanzi R.E., Arancio O., Noggle S., Gandy S. // Acta Neuropathol. Commun. 2017. V. 5. P. 77.
  21. Moreno C.L., Guardia L., Della Shnyder V., Ortiz-Virumbrales M., Kruglikov I., Zhang B., Schadt E.E., Tanzi R.E., Noggle S., Buettner C., Gandy S. // Mol. Neurodegener. 2018. V. 13. P. 33.
  22. Campos Cogo S., Gradowski Farias da Costa do Nascimento T., de Almeida Brehm Pinhatti F., de França Junio N., Santos Rodrigues B., Cavalli L.R., Elifio-Esposito S. // Exp. Biol. Med. 2020. V. 245. P. 1637–1647.
  23. Johnsen J.I., Dyberg C., Wickström M. // Front. Mol. Neurosci. 2019. V. 12. P. 9.
  24. Rosenberg R.N., Vandeventer L., De Francesco L., Friedkin M.E. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1971. V. 68. P. 1436–1440.
  25. Blusztajn J.K., Venturini A., Jackson D.A., Lee H.J., Wainer B.H. // J. Neurosci. 1992. V. 12. P. 793–799.
  26. Kumar M., Katyal A. // Data Br. 2018. V. 21. P. 2435–2440.
  27. Thompson J., London E., Johnson Jr.J. // Neuroscience. 1982. V. 7. P. 1807–1815.
  28. Thompson G., Lewis J., Mawdsley D. // 2012. https://www.dst.defence.gov.au/publication/characterisation-cell-culture-system-investigating-nerve-agent-neurotoxicology-part-i
  29. Monsma F.J., Brassard D.L., Sibley D.R. // Brain Res. 1989. V. 492. P. 314–324.
  30. Dziedzicka-Wasylewska M., Solich J. // Mol. Brain Res. 2004. V. 128. P. 75–82.
  31. Pemberton K., Mersman B., Xu F. // J. Undergrad. Neurosci. Educ. 2018. V. 16. P. A186–194.
  32. Zeineldin M., Patel A.G., Dyer M.A. // Neuron. 2022. V. 110. P. 2916–2928.
  33. Chen T., Hinton D., Zidovetzki R., Hofman F. // Lab. Invest. 1998. V. 78. P. 165–174.
  34. Sánchez S., Jiménez C., Carrera A.C., Diaz-Nido J., Avila J., Wandosell F. // Neurochem. Int. 2004. V. 44. P. 231–242.
  35. Aloe L., Rocco M.L., Balzamino B.O., Micera A. // J. Exp. Clin. Cancer Res. 2016. V. 35. P. 1–7.
  36. Martorana F., Gaglio D., Bianco M.R., Aprea F., Virtuoso A., Bonanomi M., Alberghina L., Papa M., Colangelo A.M. // Cell Death Dis. 2018. V. 9. P. 391.
  37. Reichardt L.F. // Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 2006. V. 361. P. 1545–1564.
  38. Yeo T.T., Chua-Couzens J., Butcher L.L., Bredesen D.E., Cooper J.D., Valletta J.S., Mobley W.C., Longo F.M. // J. Neurosci. 1997. V. 17. P. 7594–7605.
  39. Sobreviela T., Clary D.O., Reichardt L.F., Brandabur M.M., Kordower J.H., Mufson E.J. // J. Comp. Neurol. 1994. V. 350. P. 587–611.
  40. Wu D., Hersh L.B. // J. Neurochem. 1994. V. 62. P. 1653–1663.
  41. Blume A., Gilbert F., Wilson S., Farber J., Rosenberg R., Nirenberg M. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1970. V. 67. P. 786–792.
  42. Harris A.J., Dennis M.J. // Science. 1970. V. 167. P. 1253–1255.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2.

Скачать (477KB)
3.

4.

Скачать (611KB)
5.

Скачать (543KB)

© А.А. Корягина, О.А. Недогреева, А.А. Буянова, Ю.С. Спивак, А.П. Большаков, Н.В. Гуляева, М.Ю. Степаничев, 2023